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强化秸秆沼气发酵菌株的筛选及发酵条件的研究

来源:论文学术网
时间:2024-08-18 21:54:39
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强化秸秆沼气发酵菌株的筛选及发酵条件的研究【摘要】:我国农作物秸秆资源丰富,每年产生各类秸秆约7亿吨,但秸秆的利用率还较低,除少量用作饲料原料和造肥还田外,多数就地堆积或直接焚烧,

【摘要】:我国农作物秸秆资源丰富,每年产生各类秸秆约7亿吨,但秸秆的利用率还较低,除少量用作饲料原料和造肥还田外,多数就地堆积或直接焚烧,不仅造成资源浪费,还造成严重的环境污染。利用生物复合菌剂对农作物秸秆进行处理,进行厌氧发酵产沼气,既能解决在农村推广沼气建设所遭遇的原料不足问题,也可解决农村普遍存在的“秸秆堆积”和“秸秆焚烧”问题。因此,用高产纤维素酶菌株和产甲烷菌按一定比例混合制成强化秸秆发酵的直投式发酵剂,可加速秸秆的分解,提高沼气产气率,是实现秸秆到沼气生产的有效途径。 本文对实验室保藏的纤维素分解菌进行复壮和筛选,通过刚果红平板初筛,麸皮固体发酵复筛,得到一株高产纤维素酶的黑曲霉X-2和一株康宁木霉H-5。黑曲霉X-2的酶活可达2087U/g,比出发菌株的酶活提高了52.35%;康宁木霉H-5的酶活可达1649U/g,比出发菌株的酶活提高了45.54%。X-2和H-5连续传代6代,产酶遗传性状稳定。 通过单因素试验对黑曲霉X-2和康宁木霉H-5的培养条件进行了优化,得出黑曲霉X-2的最佳培养条件为:培养温度为30℃,培养时间为72h,复合碳源比例为稻草/麸皮的质量比为0:10,最佳氮源为酵母膏,氮源添加量为1%,固液比为1:1,接种量为1%,装瓶量为30g/250ml。康宁木霉H-5的最佳培养条件为:培养温度为30℃,培养时间为5天,复合碳源比例为稻草/麸皮的质量比为2:8,最佳氮源为酵母膏,氮源添加量为2%,固液比为1:1.5,接种量为1%,装瓶量为30g/250ml。在最适培养条件下,黑曲霉X-2和康宁木霉H-5的产孢子量分别可达330亿个/g和460亿个/g。 通过亨盖特厌氧操作技术,从沼液样品中分离到了Z-1,Z-2两株产甲烷菌。菌株Z-1为球形,一般呈不规则的球状聚集体,G-,不产生芽孢,不具运动性;在滚管中形成的菌落为圆形,灰白色,不透明;该菌株能利用H2/CO2和甲醇作为底物,最适培养温度为35℃,最适pH为7.0,最适NaCl浓度为0.2mol/L。菌株Z-2为椭圆形,单个或成小簇生长,G-,不产生芽孢,不具运动性;在滚管中形成菌落为圆形,淡黄色,不透明;该菌株能利用H2/CO2、甲酸钠和乙酸钠作为底物,最适培养温度为35℃,最适pH为6.5,最适NaCl浓度为0.1mol/L。 【关键词】:秸秆 沼气 筛选 纤维素酶 产甲烷菌
【学位授予单位】:江西农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2011
【分类号】:S216.4
【目录】:
  • 摘要4-5
  • Abstract5-9
  • 第一章 文献综述9-19
  • 1.1 秸秆概述9-10
  • 1.2 秸秆利用技术10-13
  • 1.2.1 秸秆还田技术10-11
  • 1.2.2 秸秆饲料技术11-12
  • 1.2.3 秸秆工业原料技术12-13
  • 1.2.4 秸秆气化技术13
  • 1.3 秸秆沼气发酵技术13-17
  • 1.3.1 沼气概述13
  • 1.3.2 沼气发酵原理13-14
  • 1.3.3 沼气发酵技术研究进展14-15
  • 1.3.4 沼气发酵的影响因素15-17
  • 1.4 研究目的及研究内容17-19
  • 1.4.1 研究目的和意义17
  • 1.4.2 研究内容17-19
  • 第二章 产纤维素酶菌株的筛选19-27
  • 前言19
  • 2.1 材料19-20
  • 2.1.1 出发菌株19
  • 2.1.2 培养基19-20
  • 2.1.3 仪器与器皿20
  • 2.2 方法20-22
  • 2.2.1 菌种的活化复壮20
  • 2.2.2 孢子悬液的制备20-21
  • 2.2.3 初筛21
  • 2.2.4 复筛21
  • 2.2.5 纤维素酶活力测定21-22
  • 2.2.6 菌株形态学观察22
  • 2.2.7 菌株产酶性状稳定性试验22
  • 2.2.8 拮抗实验22
  • 2.3 结果与讨论22-26
  • 2.3.1 初筛结果22-24
  • 2.3.2 复筛结果24-25
  • 2.3.3 菌株形态学观察25
  • 2.3.4 菌株产酶性状稳定性试验25-26
  • 2.3.5 拮抗实验结果26
  • 2.4 小结26-27
  • 第三章 产纤维素酶菌株发酵条件的研究27-38
  • 前言27
  • 3.1 材料27
  • 3.1.1 菌株27
  • 3.1.2 培养基27
  • 3.1.3 主要仪器与器皿27
  • 3.2 方法27-29
  • 3.2.1 培养方法27
  • 3.2.2 孢子数的测定27-28
  • 3.2.3 不同培养温度对产孢子量的影响28
  • 3.2.4 不同培养时间对产孢子量的影响28
  • 3.2.5 不同复合碳源对产孢子量的影响28
  • 3.2.6 不同氮源对产孢子量的影响28
  • 3.2.7 不同氮源添加量对产孢子量的影响28
  • 3.2.8 不同含水量对产孢子量的影响28
  • 3.2.9 不同接种量对产孢子量的影响28
  • 3.2.10 不同装瓶量对产孢子量的影响28-29
  • 3.3 结果与讨论29-37
  • 3.3.1 纤维素分解菌黑曲霉X-2发酵条件的优化29-33
  • 3.3.2 纤维素分解菌康宁木霉H-5发酵条件的优化33-37
  • 3.4 小结37-38
  • 第四章 产甲烷菌的分离筛选38-46
  • 前言38
  • 4.1 材料38-39
  • 4.1.1 样品38
  • 4.1.2 培养基38-39
  • 4.1.3 主要仪器和试剂39
  • 4.2 方法39-41
  • 4.2.1 产甲烷菌的富集培养39
  • 4.2.2 产甲烷菌的分离与纯度检测39-40
  • 4.2.3 产甲烷菌产气能力的检测40
  • 4.2.4 产甲烷菌的形态观察与生理生化特性检测40-41
  • 4.3 结果与讨论41-45
  • 4.3.1 产甲烷菌的富集与分离41
  • 4.3.2 产甲烷菌Z-1和Z-2产气能力测试结果41-42
  • 4.3.3 产甲烷菌的形态特征与生理生化特征42-45
  • 4.4 小结45-46
  • 第五章 结论与展望46-48
  • 5.1 结论46-47
  • 5.1.1 产纤维素酶菌株的筛选46
  • 5.1.2 产纤维素酶菌株培养条件的优化46-47
  • 5.1.3 产甲烷菌的分离筛选47
  • 5.2 展望47-48
  • 参考文献48-52
  • 致谢52


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