卤代甲烷甲基转移酶基因转化烟草的研究及中华补血草LsNHXs基因的功能研究
卤代甲烷甲基转移酶基因转化烟草的研究及中华补血草LsNHXs基因的功能研究【摘要】:第一章卤代甲烷甲基转移酶基因转化烟草的研究甲基溴是在全球被广泛采用的一种熏蒸杀虫剂,但是,甲基溴
【学位授予单位】:山东师范大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2008
【分类号】:Q943.2
【目录】:
- 中文摘要8-11
- Abstract11-17
- 第一部分 文献综述17-46
- 一、卤代甲烷酶促合成机制17-20
- 1 卤代甲烷的生物产生机制17-18
- 2 卤代甲烷甲基转移酶基因的克隆18-19
- 3 卤代甲烷酶促反应机制的生物学意义19-20
- 4 卤代甲烷的植物发生论20
- 二、Na~+/H~+逆向转运蛋白20-38
- 1 Na~+/H~+逆向转运蛋白的分子特性及转运机制21-27
- 1.1 Na~+/H~+逆向转运蛋白的进化分类和亚细胞定位21-23
- 1.2 Na~+/H~+逆向转运蛋白的拓扑结构和功能残基23-26
- 1.2.1 NHE 的结构与功能调节24
- 1.2.2 酵母和真菌质膜Na~+/H~+逆向转运蛋白C 端的功能24-25
- 1.2.3 植物液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白的结构25-26
- 1.3 大肠杆菌EcNhaA 的Na~+/H~+逆向转运机制26-27
- 2 植物液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白27-31
- 2.1 植物液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白基因家族27-28
- 2.2 植物液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白阳离子选择性28
- 2.3 植物液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白与植物耐盐性28-30
- 2.4 植物液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白的其它功能30-31
- 3 NHE/NHX Na~+/H~+逆向转运蛋白与囊泡运输31-33
- 4 植物质膜Na~+/H~+逆向转运蛋白33-38
- 4.1 植物质膜Na~+/H~+逆向转运蛋白与植物耐逆的关系33-35
- 4.2 SOS 信号通路35-38
- 4.2.1 SOS 信号通路元件35-36
- 4.2.2 SOS 信号通路36-37
- 4.2.3 SOS 信号通路的保守性37-38
- 4.3 AtNHX838
- 三、囊泡介导的植物细胞可溶性物质的转运38-43
- 1 囊泡参与盐的分泌39-40
- 2 囊泡参与蜜的分泌40-41
- 3 囊泡参与有机酸和蔗糖的分泌41-42
- 4 囊泡参与保卫细胞和运动细胞的溶质运输42
- 5 囊泡参与糖和黏附多糖的分泌42-43
- 四、本实验的意义43-46
- 1 甲基溴替代技术的开发43-44
- 2 中华补血草泌盐机制探讨44-46
- 第二部分 实验论文46-106
- 第一章 卤代甲烷甲基转移酶基因转化烟草的研究46-73
- 一、实验材料46-48
- 1 植物材料及线虫46
- 2 菌种及质粒46
- 3 酶及化学试剂46
- 4 主要仪器设备46-47
- 5 质粒提取液47
- 6 培养基47-48
- 7 引物序列48
- 二、实验方法48-61
- 1 基本分子生物学实验技术49-55
- 1.1 大肠杆菌感受态的制备及转化49
- 1.2 质粒的提取49-50
- 1.3 PCR、酶切以及连接50
- 1.4 Gene Clean 方法从琼脂糖凝胶上回收外源基因片段50
- 1.5 植物基因组DNA 的提取及Southern 杂交膜的制备50-51
- 1.5.1 植物基因组DNA 的提取—CTAB 法50-51
- 1.5.2 Southern 杂交膜的制备51
- 1.6 Trizol 试剂提取植物总RNA51-52
- 1.7 异硫氰酸胍法提取植物总RNA 及Northern 杂交膜的制备52-53
- 1.7.1 植物组织总RNA 的提取—异硫氰酸胍法52-53
- 1.7.2 Northern 杂交膜的制备53
- 1.7.2.1 RNA 甲醛变性胶电泳53
- 1.7.2.2 RNA 杂交膜的制备53
- 1.8 Southern 杂交和Northern 杂交分析53-54
- 1.8.1 cDNA 探针的制备53-54
- 1.8.2 杂交过程54
- 1.8.3 洗膜及显影54
- 1.9 Western 杂交54-55
- 1.9.1 植物蛋白的提取方法一54
- 1.9.2 植物蛋白的提取方法二—丙酮沉淀法54-55
- 1.9.3 SDS-PAGE55
- 1.9.4 转膜55
- 1.9.5 Western 检测55
- 2 ThMCT、SsMCT 基因的克隆55-58
- 2.1 ThMCT、SsMCT 基因保守区的克隆55-56
- 2.2 ThMCT、SsMCT 基因5’端序列的克隆56-58
- 2.3 ThMCT、SsMCT 基因3’端序列的克隆58
- 3 AtMCT、ThMCT 和SsMCT 基因过量表达载体的构建58-59
- 4 植物表达载体的农杆菌转化与鉴定59
- 5 农杆菌介导的烟草转化59-60
- 6 转基因烟草的PCR 鉴定60
- 7 转基因烟草卤代甲烷释放量的测定60-61
- 8 转基因烟草的线虫抗性实验61
- 三、实验结果61-71
- 1 MCT 基因的克隆及序列分析61-66
- 1.1 ThMCT 基因的克隆61-62
- 1.2 SsMCT 基因的克隆62-63
- 1.3 ThMCT 和SsMCT 的氨基酸序列分析63-64
- 1.4 ThMCT 和SsMCT 的系统谱系分析64-65
- 1.5 AtMCT、ThMCT 和SsMCT 的拓扑结构分析65-66
- 2 AtMCT、ThMCT 和SsMCT 基因过量表达载体的构建66
- 3 植物表达载体的农杆菌转化与鉴定66
- 4 农杆菌介导的烟草转化66
- 5 转基因烟草的分子鉴定66-69
- 5.1 转基因烟草的PCR 分析66
- 5.2 转基因烟草的Southern 杂交分析66-67
- 5.3 转基因烟草的Northern 杂交分析67-68
- 5.4 转基因烟草的Western 杂交分析68-69
- 6 转基因烟草卤代甲烷释放量的测定69-70
- 7 转基因烟草的线虫抗性实验70-71
- 四、讨论71-73
- 1 ThMCT 和SsMCT 的序列特征71
- 2 过量表达AtMCT 提高了转基因烟草对线虫的抗性71-73
- 第二章 中华补血草LsNHXs 基因的功能研究73-106
- 一、实验材料73-75
- 1 植物材料73
- 2 菌种及质粒73
- 3 酶及化学试剂73
- 4 主要仪器设备73
- 5 质粒提取液73
- 6 培养基73-74
- 7 引物序列74-75
- 二、实验方法75-84
- 1 基本分子生物学实验技术75-77
- 1.1 大肠杆菌感受态的制备及转化75
- 1.2 质粒的提取75
- 1.3 PCR、酶切以及连接75
- 1.4 Gene Clean 方法从琼脂糖凝胶上回收外源基因片段75
- 1.5 植物基因组DNA 的提取及Southern 杂交分析75
- 1.6 Trizol 法和异硫氰酸胍法提取植物总RNA75
- 1.7 CTAB 改良法提取中华补血草总RNA75-76
- 1.8 DNaseI (RNase Free) 去除补血草RNA 中的基因组DNA76-77
- 2 中华补血草LsNHXs 基因的克隆77-78
- 2.1 中华补血草LsNHXs 基因保守区的克隆77
- 2.2 LsNHX2 和LsNHX3 基因3’端序列的克隆77-78
- 3 LsNHXs 基因RNAi 沉默表达载体的构建78-79
- 3.1 LsNHX1、LsNHX2、LsNHX3 单基因RNAi 沉默表达载体的构建78-79
- 3.2 LsNHX1+LsNHX2 双基因RNAi 沉默表达载体的构建79
- 4 植物表达载体的农杆菌转化与鉴定79-80
- 5 中华补血草的遗传转化80
- 5.1 农杆菌菌液的制备80
- 5.2 补血草叶片的转化80
- 5.3 抗性芽的生根80
- 5.4 抗性苗的快速繁殖及移栽80
- 6 转基因补血草的分子鉴定80-82
- 6.1 转基因补血草的PCR 鉴定80-81
- 6.2 转基因补血草LsNHXs 基因表达的Real-time PCR 分析81-82
- 6.2.1 补血草RNA 的提取及定量81
- 6.2.2 RNA 的反转录及cDNA 模板的稀释81
- 6.2.3 实时定量PCR 引物的设计81-82
- 6.2.4 实时定量PCR(Real-time PCR)82
- 6.2.5 Real Time PCR 数据分析的方法82
- 7 转基因补血草的耐逆性分析82-84
- 7.1 野生型与转基因补血草的快速繁殖82-83
- 7.2 野生型与转基因补血草的盐胁迫处理83
- 7.3 叶片表面分泌物中Na~+、K~+离子含量的测定83
- 7.4 叶面积的测定83
- 7.5 叶片组织内Na~+、K~+离子含量的测定83
- 7.6 植物材料含水量的测定83-84
- 三、实验结果84-103
- 1 中华补血草LsNHXs 基因的克隆84-89
- 1.1 中华补血草RNA 的提取84
- 1.2 中华补血草LsNHXs 基因保守区的克隆84-86
- 1.3 LsNHX2 和LsNHX3 基因3’端序列的克隆86-89
- 2 LsNHXs 基因RNAi 沉默表达载体的构建89-92
- 2.1 LsNHXs 单基因RNAi 沉默表达载体的构建及酶切验证89-90
- 2.1.1 LsNHXs 单基因RNAi 沉默表达载体的构建89-90
- 2.1.2 LsNHXs 单基因RNAi 沉默表达载体的酶切验证90
- 2.2 LsNHX1+LsNHX2 双基因RNAi 沉默表达载体的构建及酶切验证90-92
- 3 植物基因RNAi 沉默表达载体的农杆菌转化及PCR 验证92
- 4 中华补血草的遗传转化92
- 5 转基因补血草的分子鉴定92-96
- 5.1 转基因补血草的PCR 鉴定92-93
- 5.2 转基因补血草的Southern 杂交分析93-94
- 5.3 转基因补血草LsNHXs 基因表达的Real-time PCR 分析94-96
- 6 转基因补血草的耐逆性分析96-103
- 6.1 LsNHX2 转基因补血草的耐逆性分析96-98
- 6.1.1 LsNHX2 转基因补血草在不同盐胁迫条件下的生长情况96
- 6.1.2 盐处理对LsNHX2 转基因植株与野生型植株含水量的影响96
- 6.1.3 盐处理对LsNHX2 转基因植株与野生型植株叶片表面分泌物中Na~+、K~+离子含量的影响96-97
- 6.1.4 盐处理对LsNHX2 转基因植株与野生型植株叶片组织内Na~+、K~+离子含量的影响97-98
- 6.2 LsNHX1、LsNHX3 和LsNHX1~+LsNHX2 转基因补血草的耐逆性分析98-103
- 6.2.1 LsNHX1、LsNHX3 和LsNHX1+LsNHX2 转基因补血草在不同盐胁迫条件下的生长情况98
- 6.2.2 盐处理对LsNHX1、LsNHX3 和LsNHX1+LsNHX2 转基因植株与野生型植株含水量的影响98-99
- 6.2.3 盐处理对LsNHX1 转基因植株与野生型植株叶片表面分泌物中Na~+、K~+离子含量的影响99-100
- 6.2.4 盐处理对LsNHX1 转基因植株与野生型植株叶片组织内Na~+、K~+离子含量的影响100
- 6.2.5 盐处理对LsNHX3 转基因植株与野生型植株叶片表面分泌物中Na~+、K~+离子含量的影响100-101
- 6.2.6 盐处理对LsNHX3 转基因植株与野生型植株叶片组织内Na~+、K~+离子含量的影响101
- 6.2.7 盐处理对LsNHX1+LsNHX2 转基因植株与野生型植株叶片表面分泌物中Na~+、K~+离子含量的影响101-102
- 6.2.8 盐处理对LsNHX1+LsNHX2 转基因植株与野生型植株叶片组织内Na~+、K~+离子含量的影响..102-103
- 四、讨论103-106
- 1 中华补血草RNA 的提取103-104
- 2 RNAi 技术在植物功能基因组学研究中的应用104
- 3 中华补血草液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白LsNHXs 对其耐盐性的影响104-106
- 图版106-110
- 参考文献110-121
- 攻读博士学位期间发表的论文121-122
- 致谢122
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